Scholar Hub/Chủ đề/#cytomegalovirus cmv/
Cytomegalovirus (CMV) là một loại virus thuộc họ Herpesviridae. Nó có khả năng tấn công và nhiễm trùng người, gây ra bệnh nhiễm CMV ở người. CMV phổ biến và phầ...
Cytomegalovirus (CMV) là một loại virus thuộc họ Herpesviridae. Nó có khả năng tấn công và nhiễm trùng người, gây ra bệnh nhiễm CMV ở người. CMV phổ biến và phần lớn người mắc nhiễm chứng bệnh thường không biết mình bị nhiễm virus này, bởi vì triệu chứng thường không rõ ràng hoặc tương đối nhẹ.
Tuy nhiên, CMV cũng có thể gây ra những vấn đề nghiêm trọng đối với những người có hệ miễn dịch yếu, như những người suy giảm miễn dịch, phụ nữ mang thai và dự đoán cung cấp thai. Nó có thể gây ra các vấn đề như viêm gan, viêm phổi, viêm màng não, viêm võng mạc và nhiễm trùng dọc khí quản.
CMV lan truyền chủ yếu thông qua tiếp xúc với chất cơ thể của một người nhiễm bệnh, chẳng hạn như nước bọt, nước mắt, nước tiểu, dịch âm đạo, máu hoặc chất nhầy. Việc giữ vệ sinh cá nhân, như rửa tay thường xuyên, có thể giúp giảm nguy cơ nhiễm CMV.
Cytomegalovirus (CMV) là một loại virus lớn, gồm DNA đóng gói bên trong một vỏ bọc protein. Đây là một trong những loại virus phổ biến nhất trên thế giới, và tới 60-70% dân số đã từng tiếp xúc và nhiễm CMV trong đời.
CMV có thể ảnh hưởng đến nhiều bộ phận khác nhau trong cơ thể, bao gồm gan, phổi, võng mạc, hệ thần kinh trung ương và hệ tiêu hóa. Tuy nhiên, hầu hết những người lớn và trẻ em nhỏ bình thường không gặp vấn đề nghiêm trọng sau khi nhiễm CMV. Trong nhiều trường hợp, người nhiễm virus có thể không biết mình đang mắc bệnh do triệu chứng thường không rõ ràng.
Nhưng đối với những người có hệ miễn dịch yếu, như người suy giảm miễn dịch do bị bệnh, nhận phẫu thuật ghép tạng hoặc đang tiếp tục điều trị ung thư, CMV có thể gây ra những vấn đề nghiêm trọng. Cụ thể, CMV có thể gây viêm gan, viêm phổi, viêm màng não, viêm võng mạc và nhiễm trùng dọc khí quản.
CMV lây lan qua các đường tiếp xúc với chất cơ thể nhiễm virus, như nước bọt, nước mắt, nước tiểu, dịch âm đạo, máu hoặc chất nhầy. Bạn có thể tiếp xúc CMV khi cầm chắc tay, hôn hít, dùng chung vật dụng, như dụng cụ ăn uống hoặc những vật dụng chăm sóc cá nhân với người nhiễm virus. Cũng có thể bị nhiễm CMV thông qua quan hệ tình dục không an toàn hoặc khi thai nhi được nhiễm từ mẹ mang bệnh.
Để giảm nguy cơ nhiễm CMV, có thể thực hiện những biện pháp sau:
1. Rửa tay thường xuyên bằng xà bông và nước hoặc sử dụng chất khử trùng chứa cồn.
2. Tránh tiếp xúc với nước bọt, nước mắt, nước tiểu, dịch âm đạo, máu hoặc chất nhầy từ người nhiễm bệnh.
3. Sử dụng đồ dùng cá nhân riêng, như chén, đũa, cốc, giường nằm, ấm đun sữa, v.v.
4. Tránh quan hệ tình dục không an toàn.
5. Tránh tiếp xúc với trẻ em nhỏ và phụ nữ mang thai nếu bạn đang có triệu chứng nhiễm CMV.
Nếu bạn lo lắng về CMV hoặc có triệu chứng nghi ngờ, hãy tham khảo ý kiến của bác sĩ để được tư vấn và xác định chính xác tình trạng của mình.
Infusion of cytomegalovirus (CMV)–specific T cells for the treatment of CMV infection not responding to antiviral chemotherapy Blood - Tập 99 Số 11 - Trang 3916-3922 - 2002
We adoptively transferred donor-derived cytomegalovirus (CMV)-specific T-cell lines into 8 stem cell transplant recipients lacking CMV-specific T-cell proliferation. All patients, of whom one was infected by a CMV strain that was genotypically ganciclovir resistant, had received unsuccessful antiviral chemotherapy for more than 4 weeks. CMV-specific lines had been prepared by repetitive stimulation with CMV antigen, which increased the percentage of CMV-specific T cells and ablated alloreactivity completely even against patients mismatched for 1 to 3 HLA antigens. After transfer of 107 T cells/m2 at a median of 120 days (range, 79-479 days) after transplantation, no side effects were noticed. Despite cessation of antiviral chemotherapy, the CMV load dropped significantly in all 7 evaluable patients, with a maximal reduction after a median of 20 days (range, 5-31 days). In 2 patients with high virus load, the antiviral effect was only transient. One of these patients received a second T-cell infusion, which cleared the virus completely. At a median of 11 days after transfer, CMV-specific T-cell proliferation was demonstrated in 6 patients, and an increase in CMV-specific CD4+ T cells was demonstrated in 5 patients. In 6 patients, 1.12 to 41 CMV-specific CD8+ T cells/μL blood were detected at a median of 13 days after transfer, with an increase in all patients lacking CMV-specific CD8+ T cells prior to transfer. Hence, anti-CMV cellular therapy was successful in 5 of 7 patients, whereas in 2 of 7 patients, who received an intensified immune suppression at the time of or after T-cell therapy, only transient reductions in virus load were obtained.
Human cytomegalovirus harbors its own unique IL-10 homolog (cmvIL-10) Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America - Tập 97 Số 4 - Trang 1695-1700 - 2000
We identified a viral IL-10 homolog encoded by an ORF (UL111a) within the human cytomegalovirus (CMV) genome, which we designated cmvIL-10. cmvIL-10 can bind to the human IL-10 receptor and can compete with human IL-10 for binding sites, despite the fact that these two proteins are only 27% identical. cmvIL-10 requires both subunits of the IL-10 receptor complex to induce signal transduction events and biological activities. The structure of the cmvIL-10 gene is unique by itself. The gene retained two of four introns of the IL-10 gene, but the length of the introns was reduced. We demonstrated that cmvIL-10 is expressed in CMV-infected cells. Thus, expression of cmvIL-10 extends the range of counter measures developed by CMV to circumvent detection and destruction by the host immune system.
Cytomegalovirus (CMV) antigenemia assay is more sensitive than shell vial cultures for rapid detection of CMV in polymorphonuclear blood leukocytes Journal of Clinical Microbiology - Tập 30 Số 11 - Trang 2822-2825 - 1992
We compared the cytomegalovirus (CMV) antigenemia assay with shell vial cultures of polymorphonuclear leukocyte (PMNL)-enriched blood fractions for rapid diagnosis of CMV viremia. PMNL fractions of 280 blood specimens from 171 patients (170 solid-organ transplant recipients and 1 patient undergoing pretransplant evaluation) were inoculated in shell vial and conventional CMV cultures. A commercially available kit (CMV-vue kit; INCSTAR Corp.) was used for the CMV antigenemia assay, in which PMNL preparations were stained with monoclonal antibodies directed against the CMV protein pp65. Mixed-leukocyte blood fractions from the same blood specimens were inoculated in parallel shell vial and conventional cultures. CMV viremia (defined by the isolation of CMV in conventional cultures) was detected in 32 (13%) of 245 PMNL fractions included in the final analysis. Twenty-eight (87.5%) were also positive in the CMV antigenemia assay, whereas 22 (69%) were positive in shell vial cultures. Ten (4%) additional PMNL fractions positive only in the CMV antigenemia assay were from eight patients with active CMV infections (six patients), who had previous or subsequent episodes of CMV viremia (seven patients), or in whom CMV was isolated in cultures of simultaneously obtained mixed-leukocyte fractions (three patients). Overall, the CMV antigenemia assay was significantly more sensitive than shell vial cultures for detection of CMV in the PMNL fraction of blood leukocytes (P < 0.01, McNemar's test), and we recommend it as the method of choice for rapid diagnosis of CMV viremia.
CD8 lymphocytosis in primary cytomegalovirus (CMV) infection of allograft recipients: expansion of an uncommon CD8+ CD57− subset and its progressive replacement by CD8+CD57+ T cells Clinical and Experimental Immunology - Tập 95 Số 3 - Trang 465-471 - 2008
SUMMARYAllograft recipients undergoing eytomegalovirus infection present increased proportions of circulating CD8+ lymphocytes. A longitudinal study of 11 kidney and five liver allograft recipients with primary CMV infection but no other etiological factor of graft dysfunction revealed selective imbalances of peripheral blood CDS+ T cell subsets. Initially, CMV viraemia is associated with elevated CDS+ bright T cell numbers and T cell activation. Activation markers fall to normal when viral cultures become negative (before the end of the first month). During the second to sixth month, most (12/16) patients keep up high CD8+ T cell counts (1050-2900 CD8+ cells/mm3), comprising an uncommon CD8+ T cell subset, as 45-73% of CD8+bright lymphocytes were CD3+ and TCRαβ+, but were not stained by anti-CD28, CDIIb, CD16. CD56. and CD57 antibody. Unexpectedly, CD8+CD57+ T cells, a hallmark of CMV infection, do not appear until the second to sixth month of primary CMV infection, and their numbers increase progressively thereafter. They become the predominant CD8+ T cell subset after 6 months of infection and their persistence for several (up to 4) years is strongly correlated (r = 0-87) with expansion of CD8+ cells. By analysis with MoAbs, there was no bias towards the use of particular TCR-Vβ gene families al any time of primary CMV infection. Persistence of CD8 lymphocytosis is thus directly related to the rate of expansion of an uncommon CD8+ CD57- subset and its progressive replacement by CD8+ CD57+ T cells that are chronically elicited by CMV.
Development of a New Cytomegalovirus (CMV) Immunoglobulin M (IgM) Immunoblot for Detection of CMV-Specific IgM Journal of Clinical Microbiology - Tập 36 Số 11 - Trang 3337-3341 - 1998
ABSTRACT
We developed a new cytomegalovirus (CMV) immunoglobulin M (IgM) immunoblot to detect CMV-specific IgM in human sera. The new test contains four viral proteins (vp150, vp82, vp65, and vp28) purified from viral particles and four recombinant proteins (rp150, rp130, rp52, and rp38) purified from
Escherichia coli
. These antigens were individually loaded onto nitrocellulose strips, and the strips were then used to detect CMV-specific IgM by using a μ-specific conjugate. The new assay was evaluated in parallel with one or two IgM enzyme-linked immunosorbent assays (ELISAs) to test 592 serum samples from different groups of latently or acutely infected individuals. The sensitivity of the new assay with respect to the consensus of two ELISAs was 100%, the specificity was 98.6%, the positive predictive value was 96.9%, and the negative predictive value was 100%. We also evaluated the new test by testing sera from pregnant women and transplant recipients with a known clinical history. Our results suggest that the new test combines high sensitivity with high specificity, characteristics that are mutually exclusive with the other commercially available tests. Furthermore, a statistically significant correlation was observed between the number of IgM-reactive bands and the elevated risk of transmission from CMV-infected pregnant women to their offspring.